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紫甘薯红色素提取、纯化实验设计报告

日期:2021-01-30  类别:最新范文  编辑:一流范文网  【下载本文Word版

紫甘薯红色素提取、纯化实验设计报告 本文关键词:红色素,甘薯,纯化,提取,实验

紫甘薯红色素提取、纯化实验设计报告 本文简介:食品与生物工程学院食品科学研究训练报告题目:紫甘薯红色素的制备指导教师孙晓侠班级13级食品工程本3班姓名夏小伟学号51306023026紫甘薯红色素的提取、纯化研究一.课题的目的及意义食用色素不仅影响食品的品质,而且与人类的营养和健康密切相关。食用色素按来源分为天然和合成色素2大类。随着现代科学的发

紫甘薯红色素提取、纯化实验设计报告 本文内容:

食品与生物工程学院

食品科学研究训练报告

题目:紫甘薯红色素的制备

指导教师

孙晓侠

13级食品工程本3班

51306023026

紫甘薯红色素的提取、纯化研究

一.课题的目的及意义

食用色素不仅影响食品的品质,而且与人类的营养和健康密切相关。食用色素按来源分为天然和合成色素2大类。随着现代科学的发展,人们发现合成色素对人体有不同程度的毒性甚至致癌性,因此各国对允许使用的合成色素的种类及用量要求越来越严格。与合成色素相比,天然食用色素不仅种类繁多,色泽自然,而且安全可靠,无毒副作用,许多品种还具有药理功能。因此,从天然产物中提取和分离各种食用天然色素替代人工合成色素已成为食品科学领域研究的热点之一。

我国是世界上最大的甘薯生产国,紫甘薯品质独特,抗病、抗旱涝性强,产量高,易贮存,价格低廉。最主要的是其含有丰富的天然色素,紫甘薯色素具有抗氧化、抗突变、预防心脑血管疾病、保护肝脏、抑制肿瘤细胞发生等多种生理功能。而且,紫甘薯色素属于对光、热都比较稳定的水溶性色素,对金属离子的耐受性明显强于其他天然色素,同时还具有较强的抗还原性,在食品中较稳定,可以广泛用作食品着色剂,在加工和贮藏过程中有很大的优势。

二.实验方法

紫甘薯红色素的提取:称取适量的紫甘薯→加入提取剂(盐酸)→取上清液→吸附、洗脱→色素粗提液→旋转蒸发浓缩→冷冻干燥→色素粗提物。选取提取液浓度,提取时间,提取温度,料液比进行单因素及正交实验。

三.实验材料

紫甘薯、盐酸、X-5大孔树脂、S-8大孔树脂、95%的乙醇、旋转蒸发器、分光光度计

四.实施方案和技术路线

1.最大吸收波长的确定

根据检索资料知最大吸收波长为528nm。(李新华,林琳,鄂巍.

紫甘薯红色素提取技术的研究[J].

沈阳农业大学学报,2007,38(4):556-559.)

2.最佳提取盐酸浓度的确定

称取2.0g紫甘薯,分成五组,分别在0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%的盐酸浓度下浸提1h,在波长528nm下测吸光值,得到最佳盐酸溶液浓度。

2.最佳提取温度的确定

称取2.0g紫甘薯,分成五组,在最佳提取盐酸浓度下,分别在30、40、50、60、70℃的浸提温度下浸提1h,在波长528nm下测吸光值,得到最佳提取温度。

3.最佳料液比的确定

称取2.0g紫甘薯,分成五组,在最佳提取盐酸浓度下,最佳提取温度的条件下,分别在1:10、1:20、1:30、1:40、1:50的料液比下浸提1h,在波长528nm下测吸光值,得到最佳料液比。

4.最佳提取时间的确定

称取2.0g紫甘薯,分成五组,在最佳提取盐酸浓度下,最佳提取温度,最佳料液比的条件下,分别浸提0.5、1、1.5、2、2.5h,在波长528nm下测吸光值,得到最佳提取时间。

五.结果分析

1.最佳提取盐酸浓度的确定结果分析

组名

1

2

3

4

5

盐酸浓度(%)

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

吸光值(A)

0.374

0.428

0.582

0.584

0.589

分析数据可知,当盐酸浓度为0.3%时提取的效果已经达到了不错的效果,再增加盐酸浓度效果不显著,所以确定最佳的提取盐酸浓度为0.3%。

2.

最佳提取温度的确定的结果分析

组名

1

2

3

4

5

温度(℃)

30

40

50

60

70

吸光度(A)

0.423

0.487

0.578

0.583

0.592

分析数据可知,当提取温度达到50℃时,提取已经达到了不错的效果,再增加温度效果不显著,所以确定最佳的提取温度为50℃。

3.

最佳料液比的确定的结果分析

组名

1

2

3

4

5

料液比

1:10

1:20

1:30

1:40

1:50

吸光值(A)

0.543

0.586

0.656

0.663

0.672

分析数据可知,当料液比为1:30时,提取已经达到了不错的效果,再增加料液比效果不显著,所以确定最佳料液比为1:30。

4.

最佳提取时间的确定的结果分析

组名

1

2

3

4

5

时间(h)

0.5

1

1.5

2

2.5

吸光值(A)

0.432

0.487

0.565

0.573

0.582

分析数据可知,当提取时间为1.5h时,提取已经达到了不错的效果,再增加时间效果不显著,所以确定最佳提取时间为1.5h。

通过以上各单因素的实验测定,发现各因素对紫甘薯红色素的提取都有一定的影响,且影响程度不同,其中料液比的影响最为显著。再用正交助手对以上数据进行处理,得以下正交实验水平表

正交实验因素水平表

水平

因素

A

温度/℃

B

时间/h

C

料液比

D

盐酸浓度/%

1

40

1

1:20

0.2

2

50

1.5

1:30

0.3

3

60

2

1:40

0.4

紫甘薯色素提取L9(33)正交试验方案及结果

试验号

A

温度/℃

B

时间/h

C

料液比

D

盐酸浓度/%

吸光值/A

1

40

1

1:20

0.2

0.639

2

40

1.5

1:30

0.3

0.509

3

40

2

1:40

0.4

0.443

4

50

1

1:30

0.4

0.619

5

50

1.5

1:40

0.2

0.452

6

50

2

1:20

0.3

1.082

7

60

1

1:40

0.3

0.521

8

60

1.5

1:20

0.4

1.316

9

60

2

1:30

0.2

0.734

K1

0.530

0.593

1.012

0.608

K2

0.718

0.759

0.621

0.704

K3

0.857

0.753

0.472

0.793

R

0.327

0.166

0.540

0.185

效应曲线图

从图中可以看到最佳提取温度为60℃,最佳提取时间为1.5h,最佳料液比是1:20,最佳提取盐酸浓度为0.4%。

通过正交实验得最佳实验条件为A3B2C1D3。在此条件下,称取300g紫薯→加入0.4%盐酸6000ml→在60℃提取温度下提取1.5h→取上清液→用AB-8的大孔树脂吸附洗脱→色素粗提液→旋转蒸发器→冷冻干燥→423mg色素粗体物

5.紫甘薯红色素的纯化

采用AB-8大孔树脂对色素粗提液进行纯化。采用1cm×10cm的吸附柱,树脂填充量为8ml,流速为1ml/min,吸附饱和后,用70%乙醇水溶液以1ml/min的流速对色素进行解吸,解吸液经旋转蒸发浓缩后,冷冻干燥得色素纯品。

结论

本研究采用盐酸为提取剂,通过单因素和正交实验,确定了紫甘薯中花青素提取的最佳工艺:料液比1:20,提取时间1.5h,提取剂浓度为0.4%,提取温度为60℃;并采用了AB-8大孔树脂对300g紫薯的色素粗提液进行了纯化得到了423mg色素纯品。

六.存在的问题与讨论及建议

1.在紫甘薯红色素提取实验中,发现在提取后直接去测定吸光值过大,怎样解决?

在测定吸光值之前先将测定溶液稀释,让吸光值控制在0.2-1之间最为准确。

2.在测量吸光值的时候,有的单因素测量值会出现偏差,为什么会出现这样的情况?

出现这种情况的原因有很多种,跟原材料的大小和处理时的各项指标都有直接的联系,另一方面由于学校机器老化原因,测量存在一定的误差,解决这种问题最好的方法是做几组平行实验,取其平均值。

3.在最后旋转蒸发纯化时非常缓慢,而且提取率不高,有什么方法解决吗?

提取率跟很多因素有关,我们商量的结果是延长提取时间和升高提取温度,因为我们使用的是水浴加热,在加热时热量损失较快,没有很好的达到我们理想的提取温度。旋转蒸发缓慢的原因有两个,一是由于蒸发的温度不够,二是有可能旋转蒸发器不够密封,漏气,导致蒸发速度缓慢。我们可以通过提高蒸发时的温度和检查装备的密封性来提高蒸发速度。

参考文献

[1]

李新华,林琳,鄂巍.

紫甘薯红色素提取技术的研究[J].

沈阳农业大学学报,2007,38(4):556-559.

[2]王智勇.

紫甘薯色素提取纯化工艺及性质研究[D].

西南大学,2008.

[3]陈杰,李进伟,张连富.

紫甘薯色素的提取及稳定性研究[J].

食品科学,2011(18):154-158.

[4]杨朝霞.

紫甘薯花色苷色素提取纯化工艺研究及组分分析[D].

青岛大学,2004.

[5]王玲,邓敏姬.

紫甘薯天然红色素的提取及稳定性研究[J].

食品科技,2011(4):179-183.

[6]暴海军,袁红波,李静,等.

紫甘薯色素的研究发展[J].

安徽农业科学,2010,38(23):12386-12387.

[7]程林润,郭入安,朱璞,等.

紫甘薯色素的提取及纯化研究[J].

浙江农业科学,2011,1(1):89-91.

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